硒是人体必需的15种微量元素之一，体内良好的含硒状态能减少肿瘤的发生率^[1,2,3]，因此硒是预防肿瘤的营养元素^[4]。随着生物体内微量元素硒的含量对生物影响的研究越来越深入，对准确测定生物样品中微量元素硒的方法研究日益紧迫，对其测定准确性和检出限的要求也越来越高。

生物样品含有大量的有机物质，在测定工作中首先要完全破坏有机物，其中的硒含量也远远低于土壤、岩石等地质样品。传统的样品前处理方法主要是针对土壤、岩石等地质样品，明显不能适用于生物样品。硒是类金属元素，由于在样品消解过程中硒易生成挥发性化合物，在样品消解方法的选择上需考虑硒元素的这个特性，避免样品中硒的挥发损失。目前生物样品的前处理方法通常采用硝酸缓慢低温消解的湿法消解，由于湿法消解需要大量使用硝酸低温消解有机物，对有机质高的油脂类样品更难消解^[5,6,7]，需反复加酸，必要时加过氧化氢，造成样品前处理流程长、试剂用量大，使得样品试剂空白很难控制。而实际操作时反复加酸加热消解，缓慢的前处理过程很难保证易挥发性的硒没有损失，造成测定结果不稳定。因此解决生物样品中的有机物快速简便消解，同时避免硒的挥发损失是提高生物样品中微量元素硒检测能力的前提。随着密闭高压和微波技术的结合，微波消解仪使生物样品的前处理过程变得简便快捷^[8,9]，消解效果也明显提高，同时由于是密闭消解，可以避免易挥发元素的损失，提高样品前处理的效率和质量。

氢化物发生原子荧光光谱法(HG-AFS)是经典的测定地质样品中硒的方法，经过多年的实际应用，已经能够满足常规土壤、岩石等样品中含量相对较高的硒的分析需求^[10]。对于生物样品，硒的含量显著低于地质样品，而且其中的有机质残留使HG-AFS测定时存在仪器漂移不稳定的问题，HG-AFS的分辨率较低，已经不能满足微量硒的分析需求。本文分别采用湿法消解和微波消解两种方法对样品进行前处理，在样品溶液的测定工作中分别采用HG-AFS^[11]和电感耦合等离子体质谱法(ICP-MS)^{[12,13,14,15]}进行比对试验，主要对样品的消解时间和试剂用量方面进行优化选择，确定建立适用于批量分析多种生物样品中微量元素硒的测定方法，以解决目前常用的湿法消解存在的处理时间长、试剂用量大而且无法控制用量统一的问题，同时解决在敞开的试验环境下长时间消解造成的污染问题。

1 实验部分

1.1 仪器及工作条件

X-Series Ⅱ型电感耦合等离子体质谱仪(美国Thermo公司)。主要工作参数见表 1。

表  1  ICP-MS仪器工作条件

Table  1.  Working parameters of the ICP-MS instrument

工作参数	设定条件	工作参数	设定条件
功率	1350 W	测量方式	跳峰
冷却气(Ar)流量	13.0 L/min	扫描次数	50
辅助气(Ar)流量	0.7 L/min	停留时间/通道	10 ms
雾化气(Ar)流量	0.8 L/min	每个质量通道数	3
采样锥(Ni)孔径	1.0 mm	总采集时间	20 s
截取锥(Ni)孔径	0.7 mm	固定工作频率	27.12 MHz

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XGY-1011A型原子荧光光谱仪(中国地质科学院地球物理地球化学勘查研究所研制)。配有特制的空心阴极灯。

ETHOS TOUCH型微波消解仪(意大利Milestone公司)。主要工作参数：固定工作频率2450 MHz，电压220 V，功率2.5 kW。

1.2 硒标准溶液和主要试剂

硒标准储备溶液：ρ(Se)=100.0 μg/mL，GBW (E)080136(深圳市森维贸易有限公司)。

硒标准过渡溶液A：ρ(Se)=2.0 μg/mL，分取标准过渡溶液A配制标准过渡溶液B[ρ(Se) =0.10 μg/mL]。

分取标准过渡溶液B配制ICP-MS标准工作溶液0.005、0.010、0.050 μg/mL。

分取标准过渡溶液B配制HG-AFS标准工作溶液0.0125、0.025、0.050、0.100 μg/mL。

硝酸(超纯)、高氯酸(优级纯)、盐酸(超纯)：均为苏州晶瑞公司产品。

双氧水(超纯，上海国药集团化学试剂有限公司)。

水(电导率大于18 MΩ·cm，中国艾科浦颐洋企业发展有限公司)。

1.3 样品前处理

选取国家标准物质GBW 10010～GBW 10016，分别采用经典的湿法消解方法(硝酸-高氯酸消解)和高压密闭微波消解法进行前处理。对两组样品分别采用HG-AFS^[11]和ICP-MS^{[12,13,14,15]}进行测定。

1.3.1 硝酸-高氯酸湿法消解

准确称取0.5000 g标准物质GBW 10010～GBW 10016分别放入50 mL玻璃烧杯中，加入30 mL浓硝酸，盖上表面皿，在控温电热板上低温升至150℃消解有机物，待深棕色浓烟完全冒尽，溶液消解至无色后升高控温电热板温度至270℃，待溶液体积蒸至5 mL后取下冷却，转移至50 mL容量瓶中，水定容后摇匀。分取5 mL溶液到10 mL比色管中用水定容至刻度，摇匀后上ICP-MS直接测定硒的含量；将剩余的溶液转移到50 mL玻璃烧杯中，加入3 mL高氯酸，盖上表面皿，置于控温电热板上，低温升至270℃溶矿，待高氯酸冒浓白烟后控制体积在5 mL以下，取下加10 mL 50%盐酸定容至25 mL，摇匀、冷却，待溶液澄清后用HG-AFS测定硒的含量。取10个空白烧杯，与样品同时处理，测定空白值。

1.3.2 高压密闭微波消解

准确称取0.5000 g标准物质GBW 10010～GBW 10016，分别放入微波消解仪内罐中。加入10 mL浓硝酸，将内罐装入外罐，拧紧转子确保样品密封，放入微波消解仪中按表 2的步骤进行消解。

表  2  微波消解程序

Table  2.  Procedure of the microwave digestion

步骤	消解时间t/min	消解功率P/W	消解温度θ/℃
1	5	1000	140
2	10	1000	190
3	15	1000	200
4	20	-	-

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待微波消解仪内温度传感器显示内罐温度低于40℃后再打开内罐，将消解好的溶液转移到50 mL容量瓶中，水定容后摇匀。分取5 mL溶液到10 mL比色管中，水定容至刻度，摇匀后用ICP-MS直接测定硒的含量；将剩余的溶液转移到50 mL玻璃烧杯中，加入3 mL高氯酸，盖上表面皿，置于控温电热板上，低温升至270℃溶矿，待高氯酸冒浓白烟后控制体积在5 mL以下，取下加10 mL 50%盐酸定容至25 mL，摇匀、冷却，待溶液澄清后用HG-AFS测定硒含量。取10个空白空罐，与样品同时处理，测定空白值。

2 结果与讨论

2.1 HG-AFS测定两种消解方法制备溶液中的硒

经硝酸-高氯酸湿法消解和高压密闭微波消解两种方法制备的样品溶液，用HG-AFS进行测定的结果对比见表 3。测定结果表明：高压密闭微波消解的样品由于有机物消解得很干净，上机过程中没有大量的有机泡沫，对仪器和测定结果都没有影响，测定值与标准值吻合较好；湿法消解的样品测定时存在仪器测定结果不稳定的问题。

表  3  HG-AFS测定两种消解方法制备溶液中的硒

Table  3.  Analytical results of Se in solutions prepared with two pretreatment methods by HG-AFS

标准物质编号	w(Se)/(μg·g-1)
	湿法消解样品测定值	微波消解样品测定值	标准值
GBW 10010	0.055	0.058	0.062
GBW 10011	0.049	0.049	0.053
GBW 10012	0.015	0.018	0.021
GBW 10014	0.178	0.186	0.200
GBW 10015	0.080	0.087	0.092
GBW 10016	0.085	0.092	0.098

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两种消解方法制备的样品，用HG-AFS测定的空白值见表 4。由于高压密闭微波消解的样品制备过程中所用的试剂很少，样品空白也很低；而硝酸-高氯酸湿法消解的样品由于试剂用量大，用量很难统一，造成空白偏高和不稳定，严重影响结果的可靠性。

表  4  HG-AFS测定微波消解和湿法消解的样品空白值

Table  4.  The blank values of Se in solutions prepared with two pretreatment methods by HG-AFS

样品编号	w(Se)/(μg·g-1)
	湿法消解样品测定值	微波消解样品测定值
BL1	0.0127	0.0011
BL2	0.0108	0.0012
BL3	0.0096	0.0014
BL4	0.0116	0.0012
BL5	0.0097	0.0017
BL6	0.0092	0.0010
BL7	0.0091	0.0015
BL8	0.0109	0.0010
BL9	0.0116	0.0018
BL10	0.0100	0.0014
BL11	0.0110	0.0016
BL12	0.0123	0.0015

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2.2 ICP-MS测定两种消解方法制备溶液中的硒

经硝酸-高氯酸湿法消解和高压密闭微波消解两种方法制备的样品溶液，稀释后用ICP-MS进行测定的结果对比见表 5。测定结果表明：微波消解的样品测定结果明显好于湿法消解的样品，并且仪器在测定微波消解的样品时也明显比测定湿法消解的样品稳定。对于含量较低的样品，两组测定结果相差都较大，主要是酸度和空白都较高造成的。但ICP-MS的测定结果还是明显优于HG-AFS的测定结果。

表  5  ICP-MS测定两种消解方法制备溶液中的硒

Table  5.  Analytical results of Se in solutions prepared with two pretreatment methods by ICP-MS

标准物质编号	w(Se)/(μg·g-1)
	湿法消解样品测定值	微波消解样品测定值	标准值
GBW 10010	0.067	0.060	0.062
GBW 10011	0.059	0.052	0.053
GBW 10012	0.025	0.019	0.021
GBW 10014	0.232	0.192	0.200
GBW 10015	0.099	0.089	0.092
GBW 10016	0.105	0.093	0.098

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两种消解方法ICP-MS测定的空白值(见表 6)有较大差异。微波消解处理的空白值测定值很低而且测定结果较稳定；而湿法消解处理的空白值测定值较高，测定结果也很不稳定。这主要是微波消解法处理样品时定量加入少量硝酸进行消解，避免了湿法消解反复加硝酸消解造成的试剂用量大而且不一致所带来的试剂空白。同时，微波消解处理的时间大大短于湿法消解，消解过程中的环境影响减少到最低，降低了样品空白值。

表  6  ICP-MS测定微波消解和湿法消解的样品空白值

Table  6.  The blank values of Se in solutions prepared with two pretreatment methods by ICP-MS

样品编号	w(Se)/(μg·g-1)
	湿法消解样品测定值	微波消解样品测定值
BL1	0.0107	0.0009
BL2	0.0108	0.0009
BL3	0.0096	0.0009
BL4	0.0116	0.0012
BL5	0.0097	0.0011
BL6	0.0092	0.0009
BL7	0.0091	0.0012
BL8	0.0109	0.0010
BL9	0.0116	0.0013
BL10	0.0112	0.0010
BL11	0.0120	0.0010
BL12	0.0123	0.0014

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2.3 生物样品中硒的测定方法选择

通过上述4组不同消解方法和测定方法的实验，结果表明：在前处理过程中，由于运用了微波消解技术，使生物样品的消解过程由原来的硝酸湿法消解需3～5天的时间^[11]缩短到现在的1 h左右，大大提高了工作效率，降低了劳动强度，更适合于批量样品的快速分析；另外所加的酸量也由原来的几十毫升减少到现在的10 mL，在降低消耗的同时也明显降低了空白背景值，减少了试剂空白的干扰，使样品的检出限降低。因此，本文选择微波消解技术制备生物样品。

在选择测定仪器时，进行了HG-AFS测定和ICP-MS测定^[14]的比较。由于HG-AFS测定需要将消解好的样品溶液进一步进行高氯酸冒烟，盐酸提取后才能测定，相当于增加了样品的前处理时间，加大了工作强度。同时，在测定过程中由于样品中硒的含量远远低于地质样品，测定结果的稳定性和准确性都较差，尤其是低含量的样品，偏差较大。而ICP-MS测定是在CCT模式下将消解好的样品溶液经稀释定容后直接测定，简化了样品处理过程，相应地减少了测定误差和样品空白值，测定结果的稳定性和准确性都优于HG-AFS。因此本文选择用ICP-MS的CCT模式测定生物样品中的硒。

2.4 方法检出限

用已选择的微波消解-ICP-MS体系处理12个平行空白样品，测定其中的硒，按检出限计算公式LOD=3σ/K(σ为12次测定的标准偏差，K为标准曲线斜率)计算出方法检出限为0.01 μg/g。该方法检出限能够满足生物样品中硒的分析需求。用HG-AFS体系处理12个平行空白样品，测定空白样品中的硒的方法检出限为0.03 μg/g。显然，ICP-MS的检出限比HG-AFS的检出限低。

2.5 方法准确度和精密度

准确称取标准物质GBW 10010～GBW 10016各0.5000 g，采用微波消解-ICP-MS体系测定12次，取其平均值，测定结果见表 7。实验发现，GBW 10010、GBW 10011、GBW 10012由于含盐量少，整体而言，大多数元素含量较低，测定时基体干扰很小，内标变化很小，硒含量虽然较低，但精密度(RSD)仍然可以小于4%；而GBW 10014、GBW 10015、GBW 10016的基体干扰明显大于GBW 10010、GBW 10011、GBW 10012，这是由于样品中有部分元素含量较高，在CCT模式下，这些基体干扰已经被消除，因此，尽管内标有较大变化，但硒的测定结果很稳定可靠，精密度(RSD)小于4%。

表  7  标准物质的测定结果

Table  7.  Analytical results of Se in the standard materials

标准物质编号	w(Se)/(μg·g-1)		相对偏差/%	RSD/%
	平均测定值	标准值
GBW 10010	0.065	0.062	0.26	1.1
GBW 10011	0.057	0.053	-0.24	1.2
GBW 10012	0.019	0.021	0.29	2.4
GBW 10014	0.213	0.200	0.16	2.4
GBW 10015	0.087	0.092	-0.48	3.1
GBW 10016	0.101	0.0980	0.18	1.0

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2.6 实际样品分析

应用确定的高压密闭微波消解ICP-MS方法，对送检的近400件水稻籽实、脱水蔬菜和茶叶样品进行了分析，给出的实验测试结果用户反馈良好，表 8列出了其中10件样品的测试结果。

表  8  实际样品的分析结果

Table  8.  Analytical results of Se in real samples

实际样品	w(Se)/(μg·g-1)	实际样品	w(Se)/(μg·g-1)
水稻籽实1	0.035	脱水蔬菜2	0.256
水稻籽实2	0.046	脱水蔬菜3	0.241
水稻籽实3	0.058	茶叶1	0.085
水稻籽实4	0.064	茶叶2	0.074
脱水蔬菜1	0.187	茶叶3	0.068

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3 结语

对于硒含量相对较低的生物样品，本文通过采用湿法消解和微波消解两种消解体系，HG-AFS和ICP-MS两种测定技术进行对比试验，确定采用微波消解ICP-MS方法实现了微量硒的准确测定。微波消解ICP-MS方法的检出限为0.01 μg/g，精密度(RSD，n=12)小于4%，而HG-AFS方法的检出限为0.03 μg/g，精密度(RSD)小于10%，微波消解ICP-MS方法明显降低了检出限，提高了测定精密度。

本文应用微波消解技术处理有机物，解决了过去生物样品需大量消耗硝酸等试剂反复进行消解所造成的前处理时间长、分析成本高和背景值高的问题，满足了ICP-MS测定样品对待测溶液的酸度和低空白值的要求，可以解决应用湿法消解-HG-AFS测定方法的检出限受到制约、精密度和准确度都较差的问题。

由于生物样品种类繁多，各种样品的特性千差万别，很难用一种方法涵盖所有类型的样品，在试验中发现富含油脂类的样品如脂肪、花生等，微波消解过程中有高压罐压力过高造成泄压的现象，消解效果不理想，需再次消解，在测定过程中这类样品空白值明显偏高，有待进一步的试验解决。运用ICP-MS测定生物样品时发现生物样品的基体非常复杂，样品含盐量差异很大，在测定是需注意内标的变化，对不同种类样品要分别测定，以减少测定误差。